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    2023年生物实验报告6篇

    时间:2023-07-19 19:55:07 来源:千叶帆 本文已影响

    生物实验报告实验目的⒈学习并掌握动物细胞培养的无菌操作技术。⒉了解原代细胞培养的基本方法及操作过程。⒊学习细胞计数及营养液的配制。实验原理⒈细胞原代培养原代下面是小编为大家整理的生物实验报告6篇,供大家参考。

    生物实验报告6篇

    生物实验报告篇1

    实验目的

    ⒈学习并掌握动物细胞培养的无菌操作技术。

    ⒉了解原代细胞培养的基本方法及操作过程。

    ⒊学习细胞计数及营养液的配制。

    实验原理

    ⒈细胞原代培养

    原代细胞培养是指直接从动物体内获取的细胞、组织和器官,经体外培养后,直到第一次传代为止。这种培养,首先用无菌操作的方法,从动物体内取出所需的组织(或器官),经消化,分解成单个游离细胞,在人工培养下,使其不断的生长及繁殖。

    细胞培养是一种操作繁琐而又要求十分严谨的实验技术。要使细胞能在体外长期生长,必须满足两个基本要求:一是供给细胞存活所必须的条件,如适量的水、无机盐、氨基酸、维生素、葡萄糖及其有关的生长因子、氧气、适宜的温度,注意外环境酸碱度与渗透压的调节。二是严格控制无菌条件。

    ⒉细胞死活鉴定死活细胞的鉴定方法有很多种,常用的有染色法和仪器分析法。染色法是常用的细胞死活鉴定方法,简便,易于操作。不同的死活细胞鉴定方法有各自不同具体的反应机理,但无论采用何种办法,都是利用了死活细胞在生理机能和性质上的差异。

    染色法分化学染色法和荧光染色法,根据染色机理的不同,染料或使死细胞着色,或使活细胞着色。

    死活细胞在生理机能和性质上的差异主要包括:

    ☆死活细胞细胞膜通透性的差异:活细胞的细胞膜是一种选择性膜,对细胞起保护和屏障作用,只允许物质选择性的通过;而细胞死亡之后,细胞膜受损,通透性增加。常用的以台盼蓝鉴别细胞死活的方法就是利用了这一性质。台盼蓝,又称锥蓝,是一种阴离子型染料,不能透过完整的细胞膜。所以经台盼蓝染色后只能使死细胞着色,而活细胞不被着色。甲基蓝有类似的染色机理。植物细胞的质壁分离也可鉴定死活。

    ☆死活细胞在代谢上的差异:是采用美蓝染料鉴定酵母细胞死活的依据。美蓝是一种无毒染料,氧化型为蓝色,还原型为无色。由于活细胞中新陈代谢的作用,使细胞内具有较强的还原能力,能使美蓝从蓝色的氧化性变为无色的还原型,因此美蓝染色后活的酵母细胞无色;而死细胞或代谢缓慢的老细胞,则因它们的无还原能力或还原能力极弱,使美蓝处于氧化态,从而被染成蓝色或淡蓝色。

    除此之外,还有一些细胞器的专有染料。如液泡系的专有染料中性红。中性红是一种低毒性染料,可以使活细胞液泡着红色,而细胞质和细胞核不被着色;死细胞的`液泡不被着色或浅染,染料弥散于整个细胞中,细胞核和细胞质被染成红色。有时侯为了增加染色效果可以将两种染料结合使用,如甲基蓝-中性红混合染色法。

    实验用品

    ⒈材料小白鼠

    ⒉试剂

    台盼蓝、伊红、PBS缓冲液、细胞培养液(含生长因子)

    ⒊器材

    剪子、棉球、75%酒精、移液枪、无菌操作台、正置光学显微镜、倒置光学显微镜、解剖盘、滴管、离心管、离心机、注射器、Eppendorf管、培养皿、酒精灯、塑料培养皿、载玻片、盖玻片、血细胞计数板

    实验步骤

    ⒈取材

    取小鼠一只,采用断头法处死。清水洗小鼠浸入75%酒精中消毒3min,取出转入超净工作台内的解剖盘中,无菌操作打开腹腔,取出其脾脏,除去其周围的脂肪组织,并用PBS液自上而下淋洗1-2次,转入无菌培养皿中待用。

    ⒉分离脾细胞

    用滴管向培养皿中注入30滴PBS缓冲液,再用“L”型针头注射器在皿中吸取0.2毫升PBS液注入脾脏,注射时沿长轴注射。然后再用针头在脾脏上扎眼,并用“L”型针头轻轻刮出脾细胞。在均匀吹匀脾脏细胞。

    吸取上述分离的单个脾细胞悬液,放入Eppendorf管中,使量至1mL,以1000r/min离心5min。⒊培养脾细胞

    取塑料培养皿一套,用移液枪吸取培养液2mL加入塑料皿中,并将皿标记待用。取离心后的Eppendorf管,弃去上清液,用移液枪(200ul)吸取塑料皿中的培养液400ul加入弃去上清的Eppendorf管中,用枪头吹匀管底的脾细胞,吸取200ul脾细胞悬液接种于上述塑料皿中,混匀后放入37°C,5%CO2的培养箱中培养。

    ⒋配制染液

    用生理盐水配成5%台盼蓝染液,备用。⒌染色

    取0.5mL细胞悬浊液放入试管中,加入1-2滴染液。混合。2-5min后将细胞放在血细胞计数板上观察死活情况,注意不要有

    气泡产生,放大倍数为10x10。染色后活细胞不着色,死细胞显示蓝色。注意染色时间不能超过15min,否则染液将细胞毒杀。

    ⒍计数

    在10x10倍的显微镜下观察,计算血细胞计数板的4个4小方格的细胞数量。包括细胞总数与死细胞数量。压线者计上不计下,计左不计右。

    ⒎计算细胞活力

    根据公式:细胞活力=(总细胞数-死细胞数)/总细胞数×100%

    实验结果

    台盼蓝染色后的细胞(10x10)伊红染色后的细胞(10x10)

    总细胞数和活细胞数统计表(10×10)

    项目自己培养细胞老师培养细胞总细胞数个/ml活细胞数个/ml细胞活力1.4×1067.5×1053.0×1055.5×10521.4%73.3%分析与讨论

    ⒈结果分析

    本次实验中我们小组自己培养细胞所测细胞活力为21.4%,并不算高,分析得应有以下原因可能影响实验结果(包括误差):

    ⑴若在无菌操作的过程中操作不规范,导致染菌,会极大的影响观察,导致实验失败。

    ⑵若在离心分离呈单细胞的过程中离心机转速过快或时间过长很可能会导致细胞破裂,导致小鼠脾细胞大量死亡。

    ⑶染色时间过长,或观察时间过长都会导致染色试剂将细胞杀死,使细胞活力骤降,这是导致细胞活力比较低的重要原因。

    ⑷实验中的一些操作不正确或不规范的情况、计算带来的误差等也会直接导致实验误差。

    ⒉注意事项

    ⑴严格进行动物消毒,需用75%酒精消毒。

    ⑵严格进行无菌操作,防止细菌、霉菌、支原体污染,避免化学物质污染。

    ⑶吸取液体前,瓶口和吸管硬行火焰消毒;吸取液体时,避免碰撞。

    ⑷离心管入台前,管口、管壁应消毒。

    ⑸实验者离开超净台时,要随时用肘部关闭工作窗。

    ⑹器材使用时既要注意用火焰消毒,又要防止烫伤、烫死细胞。

    生物实验报告篇2

    实验 探索淀粉酶对淀粉和蔗糖的水解作用

    一、实验目的

    1. 初步学会探索酶催化特定化学反应的方法。

    2. 探索淀粉酶是否只能催化特定的化学反应。

    二、实验原理

    淀粉和蔗糖都是非还原糖,它们在酶的催化作用下都能水解成还原糖,还原糖能够与

    斐林试剂发生氧化还原反应,生成砖红色的氧化亚铜沉淀。

    用淀粉酶分别催化淀粉溶液和蔗糖溶液,再用斐林试剂鉴定溶液中有无还原糖,就可

    以看出淀粉酶是否能催化这两种化学反应。

    三、材料用具

    滴管、试管、火柴、试管架、温度计、三脚架、石棉网、酒精灯、烧杯、质量分数为2%的

    新鲜淀粉酶溶液、质量分数为3%的可溶性淀粉溶液、质量分数为3%的蔗糖溶液、斐林试剂

    四、实验过程(见书P47)物理实验报告 ·化学实验报告 ·生物实验报告 ·实验报告格式 ·实验报告模板

    五、讨论

    1.制备的可溶性淀粉溶液,必须完全冷却后才能使用。为什么?

    2.两支试管保温时,为什么要控制在60 ℃左右(低于50 ℃或高于75 ℃)?

    3.如果2号试管也产生了砖红色沉淀,可能是由哪些原因造成的?

    生物实验报告篇3

    一、实验目的

    1.初步学会探索酶的催化效率的方法。

    2.探索过氧化氢酶和Fe3+催化效率的高低。

    二、实验原理

    新鲜的猪肝中含有过氧化氢酶,Fe3+是一种无机催化剂,它们都可以催化过氧化氢分解

    成水和氧

    三、材料用具

    新鲜的质量分数为20%的猪肝研磨液、滴管、试管、火柴、试管架、质量分数为3.5%的氯化铁溶液、体积分数为3%的过氧化氢溶液。

    四、实验过程(见书P30)您正浏览的文章由www.ok3w.net()整理,版权归原作者、原出处所有。

    五、讨论

    实验时为什么要选用新鲜的猪肝?在滴入猪肝研磨液和氯化铁溶液时能否公用一个吸管?为什么?

    生物实验报告篇4

    为加强医院病原微生物实验室生物安全管理工作,确保医院平安目标的实现,我院检验科根据xxxx省《病原微生物实验室生物安全管理条例》的相关内容,对医院实验室安全管理工作进行了自查,对涉及病原微生物菌(毒)种及样本的人员进行了培训,提高他们生物安全的意识,掌握必要的生物安全知识。

    一、实验室生物安全管理工作、各项规章制度的运行情况

    医院检验科根据《病原微生物实验室生物安全管理条例》的相关规定进行学习,并定期对有关生物安全各项规章制度的运行情况进行检查,对存在的问题及时进行整改。实验室所从事的实验活动均严格遵守有关的国家标准和实验室技术规范、操作规程,并指定专人监督检查实验室技术规范和操作规程的落实情况。同时,对检查情况进行详细记录,定期召开会议讨论工作中发现的问题,及时纠正。

    二、病原微生物菌(毒)种的管理及运输

    因各方面条件限制我院现不能开展病原微生物实验室生物的检查,根据通知要求积极组织相关人员主要学习了:病原微生物实验室菌(毒)种的管理严格登记制度,收到菌(毒)种后立即进行编号登记,详细记录菌(毒)种的名称、来源、特性、用途、批号、传代日期、数量。在菌(毒)种的管理,安全保卫制度,安全保卫措施,保管过程中,传代、分发及使用,均应及时登记,定期核对库存数量。菌(毒)种在进行销毁时,灭菌指示标志,灭菌效果,同时做好销毁登记等内容。

    三、实验室生物安全突发事件的处理工作

    在此次自检中,我院实验室对以前制订的处置意外事件的应急指挥和处置体系,进一步进行了修订,使之能满足实际工作的需要。

    针对当发生自然灾害(如地震、水灾等)或设施出现故障时,我们制定了可能遇到的紧急情况及其处理原则。

    同时规范了菌(毒)种外溢在台面、地面和其他表面的的处理原则、皮肤刺伤(破损)的处理原则、离心管发生破裂的处理原则并建立了意外事故报告制度。

    在实验室的显著位置张贴了实验负责人、实验室工作人员、消防、医院、公安、工程技术人员、水、电气维修部门电话。

    四、提高意识,加强学习

    组织检验人员对《病原微生物实验室生物安全管理条例》进行全面系统的学习,同时加强了实验室的准入制度的管理,标明实验室类型、负责人及其联络方式。加强了个人安全防护,并要求检验人员严格遵守标准的操作规程进行检验。

    通过这次对微生物实验室生物安全管理工作自查,提高了全体检验人员对微生物实验室生物安全管理工作重要性的认识,加强管理,采取有效措施,确保实验室工作安全。

    生物实验报告篇5

    《观察植物细胞的质壁分离与复原》生物实验报告

    一、实验目的

    1. 初步学会观察植物细胞质壁分离和复原的方法。

    2. 理解植物细胞发生渗透作用的原理。

    二、实验原理

    当细胞液的浓度小于外界溶液的浓度时,细胞液中的水分就透过原生质层进入外界溶 液中,使细胞壁和原生质层都出现一定的收缩。由于原生质层比细胞壁的收缩性大,当细胞不断失水时,原生质层就会与细胞壁逐渐分离开,也就是分升了质壁分离当细胞液的浓度大于外界溶液的浓度时,外界溶液中的"水分就透过原生质层进入细胞液中,整个原生质层就会慢慢地恢复成原来的状态,使植物细胞逐渐发生质壁分离复原。

    三、材料用具

    紫色洋葱鳞片叶、显微镜、载玻片、盖玻片、滴管、镊子、刀片、吸水纸、清水、0.3g/ml蔗糖溶液

    四、实验过程(见书p60)

    物理实验报告 ·化学实验报告 ·生物实验报告 ·实验报告格式 ·实验报告模板

    五、讨论

    1.如果将洋葱表皮细胞浸润在与细胞液浓度相同的蔗糖溶液中,这些表皮细胞会出现什么现象?

    2.当红细胞细胞膜两侧的溶液具有浓度差时,红细胞会不会发生质壁分离现象?为什么?

    3.画一个细胞在正常状态下到经过0.3g/ml蔗糖溶液处理,再经过清水处理的细胞变化的一系列模式图。

    生物实验报告篇6

    一、实验目的:

    1、掌握显示细胞中过氧化物酶反应的原理和方法。2.了解细胞凋亡的生物学意义

    3、掌握凋亡细胞的形态学检测方法

    二、实验原理:

    1、细胞内的过氧化物酶能把许多胺类氧化为有色化合物,用联苯胺处理标本,细胞内的过氧化物酶能把联苯胺氧化为蓝色的联苯胺蓝,进而变为棕色产物,因而可以根据颜色反应来判定过氧化物酶的有无或多少。中间产物蓝色联苯胺是不稳定的,无需酶的"参加即可氧化为棕色化合物。

    2、细胞凋亡是指细胞在生理或病理条件下,遵循自身的程序,自己结束其生命的过程。它是一个主动的、高度有序的,基因控制的,一系列酶参与的过程。

    3、凋亡细胞形态学特征是:体积变小,细胞质浓缩;细胞核发生染色质凝聚和聚集于核膜周围(边缘化);细胞膜有小泡状形成;晚期细胞膜内陷形成大小不同的凋亡小体;根据细胞凋亡形态学特征进行显微观察是检测细胞凋亡的一种直观、可靠的方法。

    三、实验步骤:

    细胞中过氧化物酶的显示

    1、在载片上滴一滴PBS缓冲液;

    2、取骨髓细胞:用断颈法处死小鼠,立即剪取后肢,去除肌肉,剥出后肢股骨,剪开股骨一端,用牙签尖的一端插入剪开的小孔中,抠取少许骨髓细胞置滴有PBS的载片上;

    3、涂片:用另一玻片将骨髓细胞沿一个方向涂布推开,室温晾干;

    4、媒染:在涂片上滴0.5%硫酸铜液,以盖满涂片为宜,处理30秒-1分钟。5、倾去硫酸铜液,直接滴入联苯胺混合液反应6分钟(以盖满涂片为宜)6、清水冲洗,番红复染2min。

    7、镜检:清水冲洗,室温晾干,先低倍镜下观察,后换高倍镜下观察(油镜100×)

    细胞凋亡的形态学检测与观察吉姆萨染色:

    1、取细胞爬片置于小培养皿中(有细胞面朝上)2、生理盐水轻轻漂洗细胞3、95%乙醇固定5min

    4、PBS缓冲液洗2次

    5、吉姆萨染色液染色5min6、蒸馏水轻轻洗去染液

    7、普通光学显微镜下观察。吖啶橙染色:

    1、取细胞爬片置于小培养皿中(有细胞面朝上)2、生理盐水轻轻漂洗细胞

    3、甲醇:冰醋酸(3:1)固定5min4、PBS缓冲液洗2次每次1min

    5、0.01%吖啶橙染色液在避光环境下染色5min6、蒸馏水轻轻洗去染液

    6、选用蓝光激发滤片在荧光显微镜下观察。

    四、结果与分析:

    1、根据随机选择的几个视野的统计,该样品的细胞凋亡率=227/506×100=44.9

    Hela细胞凋亡过程中核染色质的形态变化(吖啶橙染色)

    五、思考题:

    1、细胞凋亡的调控机制

    细胞凋亡是一个受基因调控、众多细胞膜受体和胞浆蛋白参与的细胞主动自杀过程,其触发因素多种多样,包括细胞内诱导因子和抑制因子对细胞凋亡的调控。

    2、细胞凋亡的特征

    凋亡细胞形态学特征是:体积变小,细胞质浓缩;细胞核发生染色质凝聚和聚集于核膜周围(边缘化);细胞膜有小泡状形成;晚期细胞膜内陷形成大小不同的凋亡小体。

    3、研究细胞凋亡的方法

    定性的研究方法:常规琼脂糖凝胶电泳、脉冲场倒转琼脂糖凝胶电泳、形态学观察(普通光学显微镜、透射电镜、荧光显微镜)

    定量或半定量的研究方法:各种流式细胞仪方法、原位末端标记法、ELISA定量琼脂糖凝胶电泳。

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