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    无瓣海桑来源内生真菌Aspergillus,sp.HNY16-5B中的二聚呫吨类化合物*

    时间:2023-02-19 21:25:04 来源:千叶帆 本文已影响

    刘亚月,吴颖楠,佘志刚

    1. 广东海洋大学食品科技学院,广东 湛江 524088

    2. 中山大学化学学院,广东 广州 510006

    曲霉Aspergillus按生物分类学分类归入半知菌亚门Deuteromcotina、丝状菌纲Hyphomycetes、丝孢目Hyphomycetales、从梗孢科Moniliaceae,拥有不少于170 种亚种,是一类重要的微生物菌种资源[1-2]。目前常见的曲霉有棒曲霉Aspergillus clavatus、灰绿曲霉Aspergillus gluucus、黄褐曲霉Aspergillus cervinnus、烟曲霉Aspergillus fumigatus、费氏曲霉Aspergillus fisheru、黑曲霉Aspergillus niger、白曲霉Aspergillus candidus、黄曲霉Aspergillus flavus、文氏曲霉Aspergillus wentii、土曲霉Aspergillus terreus等[3]。

    作为目前最大、最广泛被研究的真菌菌属之一,曲霉为大量结构新颖的活性代谢产物的产生提供了无限可能[4-11]。中科院王斌贵课题组[6]从深海冷泉真菌Aspergillus insuetusSD-512 中分离获得3 个新的蛇孢菌素二倍半萜和3 个新的法尼基化苯酞衍生物。活性测试表明化合物显示广泛的抑菌活性。澳大利亚学者Capon 等[7]从Aspergillussp. CMB-MRF324 中分离获得6 个新的单萜millmerranones A-F,乙酰胆碱酯酶抑制活性显示,6 个化合物均显示较强的抑制活性(IC50<3.8 μmol/L)。中山大学佘志刚课题组[8]从采集自海南东寨港红树林自然保护区的红树植物海桑内生真菌Aspergillussp. 中获得了1 个新骨架的二倍半萜化合物asperterpenoid A。活性研究表明,该化合物显示强的mPTPB抑制活性(IC50=2.2 μmol/L)。同年,该课题组肖泽恩博士[9]对广西山口国家红树林保护区红树植物老鼠簕Acanthus ilicifolius的根部中分离得到1 株内生真菌Aspergillussp. 进行分离研究,得到2个含有5/8/6/6四环新骨架的二倍半萜类化合物asperterpenols A 和B。乙酰胆碱酯酶抑制活性研究表明,两者均对乙酰胆碱酯酶显示强的抑制活性(IC50值分别为2.3 和3.0 μmol/L)。德国学者[10]从地中海Limski 运河的海绵真菌中分离得到7 个新的生物碱化合物,其中包括tryptoquivaline K 和6 个含有罕见的1-氨基环丙烷-1-羧酸残基片段的fumiquinazolines K-P,该真菌经鉴定也属于Aspergillussp.。因此,开展曲霉属真菌次级代谢产物的研究具有广泛的研究前景。

    本论文对分离自海南东寨港红树林自然保护区的红树植物无瓣海桑Sonneratia apetala的内生真菌Aspergillussp. HNY16-5B 进行了发酵培养,并对其次级代谢产物进行了分离纯化和结构鉴定工作,从中获得了5个二聚呫吨化合物类化合物。经核磁解析和与文献数据比对,确定了化合物的结构,依次为asperpyrone B(1),fonsecinone A(2),aurasperone A(3),asperpyrone A(4)和dianhydroaurasperone C(5)(图1)。本论文首次通过Cu Kα的X-Ray单晶衍射,确定了化合物2的轴手性为S。并通过对比CD 谱,可确定其他的化合物的轴手性均为S。

    图1 化合物1~5的结构Fig.1 The structure of compounds 1-5

    AVANCE Ⅲ400 和500 MHz 核磁共振波谱仪(Bruker BioSpin,瑞士);
    Chirascan ™CD 光谱仪(Applied Photophysics,英国);
    DSQ EI-MS 质谱仪(Thermo Fisher,美国);
    Agilent X 射线单晶衍射(Agilent,美国),铜靶;
    HPLC:Agilent HP 1100高效液相色谱仪(Agilent,美国),Ultimate®XB-C18(5 μm,10 mm×250 mm)色谱柱。薄层层析GF254硅胶板(青岛烟台,中国);
    200-300 目柱层层析硅胶(青岛海洋化工厂,中国);
    Sephadex LH-20(GE Healthcare,英国);
    ODS 色谱填料(YMC,日本);
    常规试剂均为分析纯。

    菌株HNY16-5B采集于中国海南东寨港红树林自然保护区,由红树植物无瓣海桑Sonneratia apetala的树叶中分离得到。通过用真菌ITS 引物ITS1 和ITS4 扩增真菌DNA 序列[12],所得的碱基序列在GenBank 中用BLAST 进行进化树相似性分析,鉴定为曲霉属真菌Aspergillussp.。该菌种的DNA 序列已提交至GenBank(序号KP059102),该菌株目前保藏在中国典型培养物保藏中心。

    菌株HNY16-5B 在25 ℃下用察氏培养基发酵,培养基配方为:硝酸钠3 g,磷酸氢二钾1 g,硫酸镁0.5 g,氯化钾1 g,硫酸亚铁0.01 g,蔗糖20 g,琼脂20 g,1 L水。经121 ℃灭菌25 min、冷却后,接入种子液5 mL,静置培养的时间为28~30 d。

    发酵物用等体积的二氯甲烷/甲醇提取3 次,获得有机相;
    有机相通过减压浓缩后;
    再用乙酸乙酯萃取3 次,浓缩得到6.9 g 粗浸膏。所得粗浸膏通过柱层析(硅胶:200~300 目)进行初步分离,以石油醚-乙酸乙酯(体积比为90∶10,70∶30,60∶40,50∶50,40∶60,25∶75,100∶0)为流动体系进行梯度洗脱,收集得到7 个组分(Fr. 1~Fr. 7)。各组分经TLC 检测后,对Fr.5(836 mg)进行正相硅胶柱层析,用氯仿-甲醇(体积比为50∶1,20∶1,10∶1,5∶1,1∶1)梯度洗脱,收集获得12个组分(Fr.5-1~Fr.5-12)。组分Fr.5-7 常温下静置挥发获得固体不溶物,分别用石油醚、二氯甲烷和甲醇洗涤3 次,获得化合物1(7.5 mg)。对组分Fr.5-7采用甲醇进行重结晶,晶体分别用石油醚和甲醇洗涤3 次,获得化合物2(15.5 mg)。将Fr. 4(128 mg)通过半制备HPLC进行分析,流动相为甲醇-水,体积比为65∶35 等度洗脱,流速为2 mL/min,相应获得化合物3(tR=27.5 min,5.5 mg)和4(tR= 31.0 min,3.8 mg);
    将Fr. 6(228 mg)多次使用葡聚糖凝胶Sephadex LH-20[氯仿-甲醇(体积比1∶1);
    纯甲醇体系],收集获得8 个组分(Fr.6-1~Fr.6-8)。组分Fr.6-4常温下静置挥发获得固体不溶物,分别用石油醚、二氯甲烷和甲醇洗涤3次,得到化合物5(10.9 mg)。

    采用比色法[13]测定化合物对α-葡萄糖苷酶的抑制活性。结果显示化合物1~5对α-葡萄糖苷酶均没有明显的抑制活性(IC50>200 μmol/L)。

    4.1 菌株鉴定

    菌株HNY16-5B 经rDNA 的ITS 序列测定,测序结果如下:

    将菌株HNY16-5B 与NCBI 数据库进行比对后,选择数据库中序列相似性较高的已有序列进行BLAST,并使用MEGA7.0 构建进化树(图2)。进化树结果表明HNY16-5B属于Aspergillussp.。

    图2 HNY16-5B的进化树Fig.2 The evolutionary tree of HNY16-5B

    4.2 结构鉴定

    化合物1,黄色粉末,[α]+2.8(c0.01 CHCl3),EI-MS 给出分子离子峰为m/z556[M]+,结合1H 和13C NMR 推断该化合物的分子式为C31H24O10,不饱和度Ω=20,说明分子中存在大量不饱和体系。1H NMR 谱图给出了2 个螯合羟基质子信号δH13.42 和δH12.68;
    一组间位耦合质子信号δH6.47(d,J=2.2 Hz)和6.25(d,J=2.2 Hz);
    4 个孤立的芳香质子信号δH7.13,δH6.96,δH6.31,δH6.29;
    3 个 甲 氧 基 质 子 信 号δH4.00,δH3.63,δH3.61;
    以及2 个甲基质子信号δH2.54 和δH2.46。13C NMR谱图中显示有31个碳信号:包括2个酮羰基 碳δC183.0 和δC182.8;
    3 个 甲 氧 基δC61.7,δC56.2,δC55.5;
    2 个甲基碳δC20.7 和δC20.7;
    以及24 个成对出现的sp2杂化碳,结合氢谱中给出的2 个特征性螯合羟基质子信号,说明该化合物可能是1个角型萘并吡喃-γ-酮的二聚体。HMBC谱图中(图3),由H-9′和C-7′,C-8′,C-10′,C-14′有相关;
    H-7′和C-6′,C-8′,C-9′,C-14′有相关;
    H-3′和C-2′,C-4′,C-12′有相关,可推断其中1 个单元的骨架为2,5,6,8,10-五取代萘并角型吡喃-γ-酮。进一步分析HMBC 谱图可知,2 个甲氧基质子δH4.00 和δH3.63 分别和C-8′和C-10′相关,表明这2 个甲氧基分别连在8′位和10′位的碳上。通过同样的方法确定另1 个单元的骨架也为2,5,8,9,10-五取代角型萘并吡喃-γ-酮的二聚体。经文献检索发现,该化合物的核磁数据(表1)与已知化合物asperpyrone B的核磁数据一致[14],故鉴定化合物1为已知化合物asperpyrone B。

    图3 化合物1的HMBC相关示意图Fig.3 The HMBC correlations of compound 1

    化合物2,黄色粉末,[α]+ 12.4(c0.01 CHCl3),EI 质谱显示分子离子峰为m/z为570[M]+。结合1H 和13C NMR 推断该化合物的分子式为C32H26O10,不饱和度Ω= 20。通过对比1 和2的1H NMR 和13C NMR 数据可知(表1),化合物2也是1 个萘并吡喃-γ-酮二聚体。但是在1的1H NMR 谱图的低场区,其中1 个螯合酚羟基质子信号向更低场移动至δH15.24(线型萘并吡喃-γ-酮螯合酚羟基质子的典型特征),表明化合物2的1个结构单元由角型转变为线型。且比化合物1 多1个甲氧基质子信号δH3.43。经查阅文献,鉴定化合物2 为已知化合物fonsecinone A[15]。核磁数据如表1 所示。通过培养成功获得了化合物2 的单晶,并利用铜靶X-Ray 单晶衍射技术[16]确定了该化合物的轴手性为S。单晶数据如表2 所示,单晶结构见图4。

    图4 化合物2的单晶ORTEP图Fig.4 Perspective ORTEP drawing of compound 2

    表2 化合物2的单晶衍射数据表Table 2 Crystal parameters of compound 2

    化合物3,黄色粉末,[α]+ 87.5(c0.01 CHCl3),EI 质谱显示分子离子峰为m/z570[M]+,与化合物2 的相对分子质量一样。而比较两者的1H NMR 和13C NMR 谱图,发现其信号值极其相似。除了化合物3 中的2 个螯合酚羟基质子信号均处于更低场δH15.25 和δH14.83,故推测构成该化合物的2个单元均应为线型萘并吡喃-γ-酮。经检索文献,发现与化合物aurasperone A 核磁数据吻合,故鉴定化合物3 为已知化合物aurasperone A[17]。核磁数据如表1所示。

    表1 化合物1~5的13C NMR(CDCl3)和1H NMR(CDCl3)数据表Table 1 The 13C NMR(CDCl3)and 1H NMR(CDCl3)data of compounds 1-5

    化合物4,黄色粉末,[α]+ 17.0(c0.01 CHCl3),EI-MS 给出分子离子峰为m/z556[M]+,结合1H 和13C NMR 推断该化合物的分子式为C31H24O10,不饱和度Ω= 20。对比化合物4 和2 的核磁数据可知,前者比后者少了1个甲氧基信号δH3.78,而其他信号基本一致。经文献检索,发现与化合物asperpyrone A 的核磁数据一致,故鉴定化合物4 为已知化合物asperpyrone A[18]。核磁数据如表1所示。

    化合物5,浅黄色粉末,[α]+ 9.5(c0.01 CHCl3),EI-MS 给出分子离子峰为m/z556[M]+,结合1H 和13C NMR 推断该化合物的分子式为C31H24O10,不饱和度Ω= 20。对比化合物5 和3 的核磁数据可知,前者比后者少了1个甲氧基信号δH4.00,而其他信号基本一致。经文献检索,鉴定化合物5 为已知化合物dianhydroaurasperone C[19]。核磁数据如表1所示。

    轴手性是二聚萘并吡喃-γ-酮类化合物绝对构型确定时的一个难题。Koyama 等[20]和杨颖等[21]研究了chaetochromin A 及相似的二聚萘并吡喃-γ-酮类化合物的绝对构型。通过X-Ray单晶衍射数据分析,他们得出了化合物chaetochromin A 的轴手性构型为S,这与通过手性激子方法所得出的结果一致。经过多方研究验证,他们得出了以下结论:以280 nm 为分割带(从长波长往短波长看),当化合物出现先负后正的Cotton effect 吸收时,确定化合物为R-构型;
    而当化合物出现先正后负的Cotton effect 吸收时,确定化合物为S-构型。通过观察化合物1~5 的CD 谱可知,五者均在280 nm 处具有先正后负的Cotton effect 吸收,因此可确定上述化合物均为S构型(图5)。这与通过单晶确定的2的轴手性结果一致。

    图5 化合物1~5的CD曲线Fig.5 The CD spectra of compounds 1-5

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