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    特应性皮炎患儿外周血miR-155,表达与Th1/,Th17,细胞及相关细胞因子的相关性分析

    时间:2023-02-24 22:50:04 来源:千叶帆 本文已影响

    周晓宇 罗 亭 王润超

    湖北省十堰市太和医院皮肤科,湖北十堰 442000

    特应性皮炎(atopic dermatitis,AD)是慢性炎症性皮肤病,可引起患者剧烈瘙痒,多发于婴幼儿期,随着年龄增长患病率降低[1-4]。AD 发病与遗传、表皮屏障破坏和免疫系统失调等因素有关[5]。辅助性T 细胞(T helper cell,Th cell)1、Th17 通过分泌细胞因子调控其他免疫细胞的活化和增殖,AD 患儿中Th1/Th17存在明显失衡,Th17 细胞处于主导地位[6]。微RNA(micro RNA,MiR)-155 是一种重要的免疫系统调节剂,可靶向特定基因影响免疫细胞表型和细胞因子水平[7-8]。鉴于此,本研究拟探讨miR-155 表达与Th1/Th17 的关系,以期为临床诊治提供参考。

    1.1 一般资料

    选择2018 年2 月至2021 年9 月湖北省十堰市太和医院(以下简称“我院”)收治的89 例AD 患儿为AD 组,其中男49 例,女40 例;
    年龄2 个月~6 岁,平均(3.02±1.59)岁;
    体重指数14.5~17.3 kg/m2,平均(15.35±1.26)kg/m2。纳入标准:①符合《中国儿童特应性皮炎诊疗共识(2017 版)》[9];
    ②年龄1 个月~12 岁;
    ③患儿家属知情同意。排除标准:①湿疹、脂溢性皮炎;
    ②麻风、疥疮、真菌病、皮肤细菌感染;
    ③系统性自身免疫疾病。根据特应性皮炎评分指数[10]将AD 患者分为轻度组(0~24 分,28 例)、中度组(>24~50 分,37 例)、重度组(>50 分,24 例)。另选择同期我院体检的25 名健康儿童为对照组,其中男15 名,女10 名;
    年龄1 个月~7 岁,平均(3.11±1.62)岁;
    体重指数14.2~16.7kg/m2,平均(14.93±1.17)kg/m2。两组一般资料比较,差异无统计学意义(P >0.05),具有可比性。本研究经我院伦理委员会批准(2018-014)。

    1.2 研究方法

    所有受试者入组后24 h 内采集静脉血6 ml,离心(相对离心力为699 g,离心半径为15 cm)取上清液。miR-155 检测:取外周全血样本100 μl,采用Direct-Zol RNA MiniPrep(美国Zymo Research 公司,批号:190535)试剂盒分离总RNA,Nanodrop 分光光度计获得A260/A280比值为1.8~2.1 的RNA,采用Prime-ScriptTNRT 试剂盒(日本TaKaRa 公司,批号:J02415)将总RNA 逆转录成cDNA。LightCycler 480®实时PCR 仪(瑞士罗氏公司)和PCR SYBR Premix Ex TaqTM试剂盒(日本TaKaRa 公司,批号:GF0527)进行PCR 反应,引物由Primer 5.0 软件设计并由Sangon(China)合成。miR-155 正向引物:5’-CTCGTGGTTAATGCTAATTGTGA -3’,反向引物:5’-GTGCAGGGTCCGAGGT-3’;
    U6 正向引物:5’-GCTTCGGCAGCACATATACTA-3’,反向引物:5’-CGAATTTGCGTGTCATCCTTG-3’。PCR 反应体系:Power SYBR®Green PCR Master Mix 2.5 μl,cDNA(12.5 ng)引物2 μl,RNase-Free ddH2O 21 μl。反应条件:95℃15 min,然后是40 个循环94℃15 s,55℃30 s,70℃30 s。2-ΔΔCT法计算miR-155 相对表达量。

    Th1/Th17 检测:取肝素抗凝试管标本,加入荧光标记的鼠抗人CD4 抗体,APC 标记的鼠抗人白细胞介素(interleukin,IL)-7 抗体,PE 标记的鼠抗人RORγt抗体(武汉艾美捷科技有限公司,批号:203521),磷酸盐缓冲液重悬,CytoFLEX 流式细胞仪(美国Becton Dickinson 公司)检测Th17 细胞占比、Th1 细胞占比,计算Th1/Th17。

    Th1、Th17 相关细胞因子检测:取血清样本,Varioskan LUX 多功能酶标仪(美国赛默飞公司)应用酶链免疫吸附试验法检测Th1 细胞因子γ 干扰素(interferon-γ,IFN-γ)、IL-2,Th17 细胞因子IL-17和IL-23 水平,试剂盒购于美国赛默飞公司(批号:AF0268)。

    1.3 统计学方法

    采用SPSS 25.0 软件进行数据分析。计量资料数据用均数±标准差()表示,多组间比较采用单因素方差分析,组间两两比较采用LSD-t 检验;
    两组间比较采用独立样本t 检验。计数资料用例数或百分率表示,组间比较采用χ2检验。相关性分析采用Pearson相关性分析。以P <0.05 为差异有统计学意义。

    2.1 AD 组与对照组miR-155、Th17 和Th1 细胞占比、Th1/ Th17 比较

    AD 组miR-155 表达、Th17 细胞占比高于对照组,Th1 细胞占比、Th1/Th17 低于对照组(P <0.05)。见表1。

    表1 AD 组和对照组miR-155、Th17 和Th1 细胞占比、Th1/Th17 比较()

    表1 AD 组和对照组miR-155、Th17 和Th1 细胞占比、Th1/Th17 比较()

    注AD:特应性皮炎;
    miR:微RNA;
    Th:辅助性T 细胞

    2.2 AD 组与对照组Th1、Th17 相关细胞因子比较

    AD 组IFN-γ、IL-2、IFN-γ/IL-17 低于对照组,

    IL-17、IL-23 高于对照组(P <0.05)。见表2。

    表2 AD 组与对照组Th1、Th17 相关细胞因子比较()

    表2 AD 组与对照组Th1、Th17 相关细胞因子比较()

    注AD:特应性皮炎;
    IFN-γ:γ 干扰素;
    IL:白细胞介素

    2.3 AD 不同严重程度亚组miR-155、Th17 和Th1 细胞占比、Th1/ Th17 比较

    重度组miR-155 表达,Th17 细胞占比高于轻度组和中度组,Th1 细胞占比、Th1/Th17 低于轻度组和中度组;
    中度组miR-155 表达,Th17 细胞占比高于轻度组,Th1 细胞占比、Th1/Th17 低于轻度组(P <0.05)。见表3。

    表3 AD 不同严重程度亚组miR-155、Th17 和Th1 细胞占比、Th1/Th17 比较()

    表3 AD 不同严重程度亚组miR-155、Th17 和Th1 细胞占比、Th1/Th17 比较()

    注:与轻度组比较,aP <0.05,与中度组比较,bP <0.05。AD:特应性皮炎;
    miR:微RNA;
    Th:辅助性T 细胞

    2.4 AD 不同严重程度亚组Th1、Th17 相关细胞因子比较

    重度组IFN-γ、IL-2、IFN-γ/IL-17 低于轻度组和中度组,IL-17、IL-23 高于轻度组和中度组;
    中度组IFN-γ、IL-2、IFN-γ/IL-17 低于轻度组,IL-17、IL-23 高于轻度组(P <0.05)。见表4。

    表4 AD 不同严重程度亚组Th1、Th17 相关细胞因子比较()

    表4 AD 不同严重程度亚组Th1、Th17 相关细胞因子比较()

    注 与轻度组比较,aP <0.05;
    与中度组比较,bP <0.05。AD:特应性皮炎;
    IFN-γ:γ 干扰素;
    IL:白细胞介素

    2.5 miR-155 与Th1、Th17 及其相关细胞因子的相关性分析

    AD 组患儿miR-155 表达与Th17 细胞占比、IL-17、IL-23 呈正相关(r=0.541、0.402、0.295,P <0.05),与Th1 细胞占比、Th1/Th17、IFN-γ、IL-2、IFN-γ/IL-17呈负相关(r=-0.571、-0.607、-0.432、-0.321、-0.409,P <0.05)。

    AD 与皮肤屏障功能受损和特应性背景有关,刺激物、接触过敏原、食物等均可诱发AD[11-12]。免疫反应在AD 发病机制中发挥关键作用,T 淋巴细胞亚群间不平衡导致细胞介导的免疫反应改变,促进免疫球蛋白E(immunoglobulin E,IgE)介导的超敏反应,引起表皮炎症和屏障功能障碍[13-14]。miRNA 与免疫和炎症疾病密切相关,可通过激活先天免疫细胞,引起慢性炎症来促进哮喘、过敏性鼻炎和AD 等疾病的发展[15]。

    miR-155 是来源于B 细胞整合簇基因的一个外显子,与信使RNA3’UTR 结合调控基因表达,免疫细胞发育和适应性免疫应答[16],通过靶向c-Fos 促使树突细胞成熟,上调抗原呈递细胞表面主要组织相容性复合体Ⅱ和共刺激分子表达,间接激活CD4+T 细胞并促使初始CD4+T 细胞增殖分化[17]。有报道显示,miR-155 分别通过靶向含SH2 结构域的肌醇5-磷酸酶1和细胞因子信号抑制因子-1 激活巨噬细胞,诱导脓毒症急性肺部炎症反应[18]。在过敏性鼻炎中,下调miR-155 可调控其下游靶标GATA 连接蛋白3,抑制Th2 细胞因子减轻过敏性反应[19]。miR-155 还通过调节活性氧-环氧合酶-2 轴参与哮喘气道炎症反应[20]。本研究结果显示,miR-155 在AD 患儿外周血中表达上调,且随着病情加重表达增加,提示miR-155 过表达与AD 发病和病情进展可能有关。动物研究显示,AD 小鼠miR-155 表达,IgE、肿瘤坏死因子-α、IL-6水平均增高[21],Bergallo 等[22]研究显示,AD 患儿miR-155 表达增高且与AD 免疫失调有关。

    本研究结果显示,miR-155 过表达与AD 患儿Th1/Th17 失衡有关。Th17 是能分泌IL-17 的T 淋巴细胞亚群,其产生的IL-17 能有效介导中性粒细胞激活,诱发炎症反应。Th1 参与细胞免疫调节,辅助细胞毒性T 细胞分化,介导细胞免疫应答等[23]。本研究结果显示,AD 患儿Th1/Th17 向Th17 偏移,与王相华等[24]报道类似。可能是因为miR-155 通过下调细胞因子信号抑制因子-1 的表达来增强Th17 细胞分化,还可通过靶向IFN-γ 受体α 链促进Th1 细胞极化,调控Th1/Th17 平衡[17]。因此,miR-155 过表达可能引起Th17过度分化,导致Th1/Th17 失衡,当敲除miR-155 后则可抑制Th17 细胞分化,抑制T 细胞介导的炎症反应,恢复Th1/Th17 平衡[25]。

    综上,AD 患儿外周血miR-155 表达增高,miR-155 高表达与Th1/Th17 失衡及Th1、Th17 相关细胞因子异常有关;
    miR-155 可能通过调节Th1/Th17参与AD 发病过程。本研究不足之处在于样本量较少,尚需进一步扩大样本例数加以证实。

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